Создание непрямого метода ИФА для выявления антител к вирусу чумы собак

Лайцин Ли; Цуйцуй Чен; Хуанкунь Лян; Чжун Шухай; Леонтьев В. Н.; Войтов И. В.

Создание непрямого метода ИФА для выявления антител к вирусу чумы собак

Лайцин Ли , Цуйцуй Чен , Хуанкунь Лян , Чжун Шухай , Леонтьев В. Н., Войтов И. В.

2024

Вирус чумы собак (CDV) может вызывать острые инфекционные заболевания у различных плотоядных животных. Целью данного исследования является разработка непрямого метода ИФА для обнаружения антител к CDV.Используя очищенные рекомбинантные антигены CDV в качестве покрывающих агентов и после оптимизации условий, был разработан предварительный метод ELISA-детектирования антител, специфичных к CDV. Оптимальная концентрация рекомбинантного антигена CDV в покрытии при 2,0 мкг/мл, 100 мкл/лунка, нанесение покрытия на ночь при 4 °C, блокирование при температуре 4 °C в течение 4 часов, разведение сыворотки 1:200 и инкубация при температуре 37 °C в течение 1,5 часов или 2 часов либо 4 °C в течение ночи. Перекрестной реактивности с сывороткой, положительной по антителам к CPIV, CAV-1 и CCV, не наблюдалось, что указывает на хорошую специфичность. Коэффициент вариации как внутри, так и между партиями был ниже 5 %, а чувствительность обнаружения достигала 1:500.

Лайцин Ли , Цуйцуй Чен , Хуанкунь Лян , Чжун Шухай , Леонтьев В. Н., Войтов И. В. Создание непрямого метода ИФА для выявления антител к вирусу чумы собак. Экология и животный мир. 2024;(1):59-64.

Цитирование

Список литературы

1. Martella V., Elia G., Buonavoglia C.. Canine distemper virus. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2008;38(4):787-97, vii-viii. doi: 10.1016/j.cvsm.2008.02.007.

2. Rendon-Marin S., da Fontoura Budaszewski R., Canal C.W., Ruiz-Saenz J. Tropism and molecular pathogenesis of canine distemper virus. Virol J. 2019;16(1):30. doi: 10.1186/s12985-019-1136-6.

3. Loots A.K., Mitchell E., Dalton D.L., Kotzé A., Venter E.H. Advances in canine distemper virus pathogenesis research: a wildlife perspective. J Gen Virol. 2017;98(3):311-321. doi: 10.1099/jgv.0.000666.

4. Woo G.H., Jho Y.S., Bak E.J. Canine distemper virus infection in fennec fox (Vulpes zerda). J Vet Med Sci. 2010 Aug;72(8):1075-9. doi: 10.1292/jvms.09-0510.4.

5. Stancu A.C., Voia O.S., Boldura O.M., Pasca S.A., Luca I., Hulea A.S., Ivan O.R., Dragoescu A.A., Lungu B.C., Hutu I. Unusual Canine Distemper Virus Infection in Captive Raccoons (Procyon lotor). Viruses. 2023;15(7):1536. doi: 10.3390/v15071536.

6. Feng N., Yu Y., Wang T., Wilker P., Wang J., Li Y., Sun Z., Gao Y., Xia X. Fatal canine distemper virus infection of giant pandas in China. Sci Rep. 2016;6:27518. doi: 10.1038/srep27518.5.

7. Lin A.V. Direct ELISA. Methods Mol Biol. 2015;1318:61-7. doi: 10.1007/978-1-4939-2742-5_6.

8. Chen C.C., Lai H.R., Liang H.K. [et al.]. Establishment and preliminary application of timeresolved immunofluorescence analysis method for canine distemper virus. Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine, 2020, 42(3): 258-262.

9. Beineke A., Puff C., Seehusen F., Baumgärtner W. Pathogenesis and immunopathology of systemic and nervous canine distemper. Vet Immunol Immunopathol. 2009;127(1-2):1-18. doi: 10.1016/j.vetimm.2008.09.023.

10. Wang J., Wang J., Li R., Liu L., Yuan W. Rapid and sensitive detection of canine distemper virus by real-time reverse transcription recombinase polymerase amplification. BMC Vet Res. 2017;13(1):241. doi: 10.1186/s12917-017-1180-7.

11. Sarchahi A. A., Arbabi M., Mohebalian H. Detection of canine distemper virus in cerebrospinal fluid, whole blood and mucosal specimens of dogs with distemper using RT-PCR and immunochromatographic assays. Vet Med Sci. 2022;8(4):1390-1399. doi: 10.1002/vms3.790.

12. Knight A.R., Taylor E.L., Lukaszewski R., Jensen K.T., Jones H.E., Carré J.E., Isupov M.N., Littlechild J.A., Bailey S.J., Brewer E., McDonald T.J., Pitt A.R., Spickett C.M., Winyard P.G. A highsensitivity electrochemiluminescence-based ELISA for the measurement of the oxidative stress biomarker, 3-nitrotyrosine, in human blood serum and cells. Free Radic Biol Med. 2018;120:246-254. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2018.03.026.

13. Tan Y., Pang W., Jia X., Zhao M.H. Comparison of the performance of a chemiluminescence assay and an ELISA for detection of anti-GBM antibodies. Ren Fail. 2020;42(1):48-53. doi: 10.1080/0886022X.2019.1702056.

14. Hayrapetyan H., Tran T., Tellez-Corrales E., Madiraju C. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay: Types and Applications. Methods Mol Biol. 2023;2612:1-17. doi: 10.1007/978-1-0716-2903-1_1.

15. Kohl T.O., Ascoli C.A. Indirect Immunometric ELISA. Cold Spring Harb Protoc. 2017 May 1;2017(5). doi: 10.1101/pdb.prot093708.

16. Li L., Qiao S., Liu J., Zhou Y., Tong W., Dong S., Liu C., Jiang Y., Guo Z., Zheng H., Zhao R., Tong G., Li G., Gao F. A highly efficient indirect ELISA and monoclonal antibody established against African swine fever virus pK205R. Front Immunol. 2023;13:1103166. doi: 10.3389/fimmu.2022.1103166.

17. Li J., Cao Y., Wang M., Cheng A., Ou X., Mao S., Sun D., Liu M., Zhang S., Zhao X.X., Jia R., Yang Q., Wu Y., Zhu D., Chen S., Huang J., Gao Q., Tian B. Development of an indirect ELISA method based on the VP4 protein for detection antibody against duck hepatitis A virus type 1. J Virol Methods. 2022;300:114393. doi: 10.1016/j.jviromet.2021.114393.

18. Cheng T.Y., Magtoto R., Henao-Díaz A., Poonsuk K., Buckley A., Van Geelen A., Lager K., Zimmerman J., Giménez-Lirola L. Detection of pseudorabies virus antibody in swine serum and oral fluid specimens using a recombinant gE glycoprotein dual-matrix indirect ELISA. J Vet Diagn Invest. 2021;33(6): 1106-114. doi: 10.1177/10406387211040755.

Источник

Информация

Автор

Страницы

59-64

Год издания

2024

Ключевые слова

Коллекции

Экология и животный мир