Разработка ИФА-диагностикума для выявления специфических антител к вирусу африканской чумы свиней
Борисовец Д. С.,
Родригез-Маллон А. А.,
Тяпша Ю. И.,
Згировская А. А.,
Герасименко В. И.
2025
Разработаны рекомбинантные антигены вируса африканской чумы свиней (АЧС) путем клонирования и экспрессии белков, кодируемых двумя генами данного вируса – p72 (B646L) и p30 (CP204L). Отработаны параметры адсорбции рекомбинантных белков вируса африканской чумы свиней и определены оптимальные концентрации компонентов ИФА-диагностикума для выявления антител к антигенам вируса АЧС. Разработан ИФА-диагностикум для выявления специфических антител к вирусу африканской чумы свиней. Проведена иммунизация кроликов и получены специфические сыворотки к вирусу АЧС. Проведен подбор оптимальных концентраций компонентов диагностикума для выявления антител к антигену вируса АЧС. Проведена проверка разработанного ИФА-диагностикума по показателю специфичности и чувствительности.
Борисовец Д. С., Родригез-Маллон А. А., Тяпша Ю. И., Згировская А. А., Герасименко В. И. Разработка ИФА-диагностикума для выявления специфических антител к вирусу африканской чумы свиней. Эпизоотология Иммунобиология Фармакология Санитария. 2025;(2):29-35.
Цитирование
Список литературы
1. Кашкин, К. П. Методические разработки по клинической иммунологии / К. П. Кашкин, Е. Н. Степанова, Л. М. Скуинь. – М. : Медицина, 1997. – 518 с.
2. Gladue, D. P. Recombinant ASF live attenuated virus strains as experimental vaccine candidates / D. P. Gladue, M. V. Borca // Viruses. – 2022. – Vol. 14. – № 5. – P. 878.
3. Viral vector vaccines against ASF: Problems and prospectives / R. K. Ravilov [et al.] // Frontiers in Veterinary Science. – 2022. – Vol. 9. – P. 830244.
4. Vaccination with a gamma irradiation-inactivated African swine fever virus is safe but does not protect against a challenge / J. Pikalo [et al.] // Frontiers in Immunology. – 2022. – Vol. 13. – P. 832264.
5. Adenovirus-vectored African Swine Fever Virus antigen cocktails are immunogenic but not protective against intranasal challenge with Georgia 2007/1 isolate / S. Lokhandwala [et al.] // Veterinary microbiology. – 2019. – Vol. 235. – P. 10–20.
6. A solid-phase enzyme linked immunosorbent assay using monoclonal antibodies, for the detection of african swine fever virus antigens and antibodies / M. I. Vidal, M. Stiene, J. Henkel [et al.] // J. Virol. Methods. – 1997. – 66 (2). – Р. 211–218.
7. World Organization of Animal Health (OIE). African swine fever. Manual of Standards for diagnostic test and vaccines. – 2008.
8. High doses of inactivated African swine fever virus are safe, but do not confer protection against a virulent challenge / E. Cadenas-Fernández [et al.] // Vaccines. – 2021. – Vol. 9. – № 3. – P. 242.
9. Immunization of pigs by DNA prime and recombinant vaccinia virus boost to identify and rank African swine fever virus immunogenic and protective proteins / J. K. Jancovich [et al.] // Journal of virology. – 2018. – Vol. 92. – №. 8. – P. 10.1128/jvi.02219-17.
10. DNA-protein vaccination strategy does not protect from challenge with African swine fever virus Armenia 2007 strain / S. Y. Sunwoo [et al.] // Vaccines. – 2019. – Vol. 7, № 1. – P. 12.
11. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein-dye binding / M.M. Bradford // Anal. Biochem. – 1976. – Vol.72, № 1-2. – P. 248–254.
Похожие публикации