Флуоресцентное определение триптамина с использованием функционализированных 5-аминофлуоресцеином наночастиц золота

Anudevi S. D.; Ebenezar K. K.; Narayan S.

Флуоресцентное определение триптамина с использованием функционализированных 5-аминофлуоресцеином наночастиц золота

Anudevi S. D. , Ebenezar K. K. , Narayan S.

2026

Разработан флуоресцентный сенсор на основе восстановленных цитратом наночастиц золота (AuNP), конъюгированных с 5-аминофлуоресцеином (5AF), с использованием химии EDC/NHS для создания наночастиц AuNP@5AF. Наночастицы использованы для обнаружения триптамина (TRYP) путем измерения интенсивности флуоресценции при инкубации с различными концентрациями TRYP. Сенсор продемонстрировал эффективное тушение флуоресценции с хорошей линейностью и пределом обнаружения 4 нг TRYP. Применимость сенсора протестирована на биологических и пищевых образцах. В образцах сыра и бананов линейное усиление флуоресценции позволило количественно определить TRYP в заданных диапазонах концентраций (2–10 нг в сыре и 2–16 нг в бананах). Однако нелинейные отклики в других матрицах ограничили более широкое применение метода. Исследование влияния помех показало, что AuNP@5AF обладает высокой селективностью к TRYP по сравнению с другими аминсодержащими молекулами. В целом сенсор AuNP@5AF имеет потенциал для мониторинга безопасности пищевых продуктов путем обнаружения триптамина. Предположено, что дальнейшая оптимизация с использованием селективных лигандов может улучшить характеристики сенсора и аналитическую надежность.

Anudevi S. D. , Ebenezar K. K. , Narayan S. Флуоресцентное определение триптамина с использованием функционализированных 5-аминофлуоресцеином наночастиц золота. Журнал прикладной спектроскопии. 2026;93(4):573-1-573-10.

Цитирование

Список литературы

1. T. T. Trang, T. T. H. Pham, N. V. Dang, P. T. Nga, M. V. Linh, X. H. Vu, RSC Adv., 14, 9538–9546 (2024), doi: 10.1039/D4RA00575A.

2. Aruna, V. P. Verma, A. P. Singh, R. Shrivastava, J. Mol. Struct., 1295, 136549 (2024), doi: 10.1016/j.molstruc.2023.136549.

3. K. N. Patterson, M. A. Romero-Reyes, J. M. Heemstra, ACS Omega, 7, No. 37, 33046–33053 (2022), doi: 10.1021/acsomega.2c03085.

4. R. Singh, S. P. Srinivas, M. Kumawat, H. K. Daima, OpenNano, 15, 100194 (2024), doi: 10.1016/j.onano.2023.100194.

5. R. Ding, E. Frei, M. Fardanesh, H. H. Schrenk, P. Kremer, W. E. Haefeli, J. Clin. Pharmacol., 51, No. 5, 672–678 (2011).

6. S. Ngernpimai, T. Puangmali, A. Kopwitthaya, P. Tippayawat, A. Chompoosor, S. Teerasong, ACS Appl. Nano Mater., 7, No. 11, 13124–13133 (2024), doi: 10.1021/acsanm.4c01631.

7. F. F. E. Kohle, J. A. Hinckley, U. B. Wiesner, J. Phys. Chem. C, 123, No. 15, 9813–9823 (2019), doi: 10.1021/acs.jpcc.9b00297.

8. C. Ayala-Orozco, J. G. Liu, M. W. Knight, Y. Wang, J. K. Day, P. Nordlander, et al., Nano Lett., 14, No. 5, 2926–2933 (2014), doi: 10.1021/nl501027j.

9. V. Kiran, A. Thirumalai, P. Durgadevi, N. Akhtar, A. D. Prabhu, K. Girigoswami, et al., J. Colloid Interface Sci., 10, No. 1, 4 (2026).

10. P. Pallavi, K. Girigoswami, K. Harini, P. Gowtham, A. Thirumalai, A. Girigoswami, Naunyn Schmiedebergs Arch. Pharmacol., 398, No. 1, 867–880 (2025), doi: 10.1007/s00210-024-03321-2.

11. N. Hasanova, S. E. Çelik, R. Apak, Food Comp. Anal., 114, 104837 (2022), doi: 10.1016/j.jfca.2022.104837.

12. M. Gao, S. Li, Y. Lin, Y. Geng, X. Ling, L. Wang, et al., ACS Sens., 1, No. 2, 179–184 (2016), doi: 10.1021/acssensors.5b00182.

13. D. J. E. Costa, A. M. Martínez, W. F. Ribeiro, K. M. Bichinho, M. S. Di Nezio, M. F. Pistonesi, et al., Talanta, 154, 134–140 (2016), doi: 10.1016/j.talanta.2016.03.063.

14. N. Malini, S. Murugesan, A. Siva, Biosens. Nanotechnology, 245–266 (2023).

15. S. Narayan, A. Rajagopalan, J. S. Reddy, A. Chadha, RSC Adv., 4, No. 3, 1412–1420 (2014), doi: 10.1039/C3RA45887C.

16. H. Li, X. Wei, Y. Zhang, Y. Xu, K. Lu, C. Li, et al., J. Alloys Compd., 685, 820–827 (2016), doi: https://doi.org/10.1016/j.jallcom.2016.06.119.

17. H. Ma, Z. Li, N. Xue, Z. Cheng, X. Miao, Microchim. Acta, 185, No. 2, 93 (2018), doi: 10.1007/s00604-017-2633-1.

18. J. Huang, F. Li, R. Guo, Y. Chen, Z. Wang, C. Zhao, et al., Microchim. Acta, 185, No. 5, 260 (2018), doi: 10.1007/s00604-018-2798-2.

19. A. C. Manetta, L. Di Giuseppe, M. Giammarco, I. Fusaro, A. Simonella, A. Gramenzi, et al., J. Chromatogr. A, 1083, No. 1, 219–222 (2005), doi: 10.1016/j.chroma.2005.06.039.

20. C. del Mar Verde Méndez, M. P. Forster, M. Á. Rodríguez-Delgado, E. M. Rodríguez-Rodríguez, C. Díaz Romero, Eur. Food Res. Technol., 217, No. 4, 287–290 (2003), doi: 10.1007/s00217-003-0762-8.

21. Y. Ito, Y. Ikai, H. Oka, J. Hayakawa, T. Kagami, J. Chromatogr. A, 810, No. 1, 81–87 (1998), doi: 10.1016/S0021-9673(98)00185-X.

22. C. J. Haglock-Adler, A. Hurley, F. G. Strathmann, Clin. Biochem., 47, No. 15, 80–82 (2014), doi: 10.1016/j.clinbiochem.2014.07.008.

23. A. H. A. Hassan, L. Sappia, S. L. Moura, F. H. M. Ali, W. A. Moselhy, Md. P. T. Sotomayor, et al., Talanta, 194, 997–1004 (2019), doi: 10.1016/j.talanta.2018.10.066.

24. A. Serag, M. A. Algarni, A. A. Abd Al Maksoud, F. T. Alsulami, E. S. Alatwi, S. I. Alaqel, et al., J. Photochem. Photobiol. A Chem., 471, 116730 (2026), doi: 10.1016/j.jphotochem.2025.116730.

25. R. Raghav, S. Srivastava, Biosens. Bioelectron., 78, 396–403 (2016), doi: 10.1016/j.bios.2015.11.066.

26. Y. Yu, S. Ye, Z. Sun, J. You, W. Li, Y. Song, et al., RSC Adv., 12, No. 54, 35260–35269 (2022), doi: 10.1039/d2ra05037d.

27. L. Pang, T. Zhang, Y. Liu, D. Li, J. Li, M. Guan, et al. Sens. Actuator B-Chem., 391, 134061 (2023), doi: 10.1016/j.snb.2023.134061.

28. A. C. Morosanu, D. G. Dimitriu, D. O. Dorohoi, J. Mol. Struct., 1180, 723–732 (2019), doi: 10.1016/j.molstruc.2018.12.057.

29. M. Iosin, P. Baldeck, S. Astilean, Nucl. Instrum. Methods Phys. Res. B, 267, No. 2, 403–405 (2009), doi: 10.1016/j.nimb.2008.10.055.

30. P. V. Kumar, B. G. Singh, N. Maiti, M. Iwaoka, K. Indira Priyadarsini, J. Colloid Interface Sci., 436, 179–185 (2014), doi: 10.1016/j.jcis.2014.08.062.

31. K. A. Kang, J. Wang, J. B. Jasinski, S. Achilefu, J. Nanobiotechnology, 9, No. 1, 16 (2011), doi: 10.1186/1477-3155-9-16.

32. M. Swierczewska, S. Lee, X. Chen, Phys. Chem. Chem. Phys., 13, No. 21, 9929–9941 (2011), doi: 10.1039/C0CP02967J.

33. I. Fratoddi, A. Cartoni, I. Venditti, D. Catone, P. O’Keeffe, A. Paladini, et al., J. Colloid Interface Sci., 513, 10–19 (2018), doi: 10.1016/j.jcis.2017.11.010.

34. M. H. Mohd-Zahid, S. N. Zulkifli, C. A. Che Abdullah, J. Lim, S. Fakurazi, K. K. Wong, et al., RSC Adv., 11, No. 26, 16131–16141 (2021), doi: 10.1039/D1RA01093J.

35. S. K. Ghosh, A. Pal, S. Kundu, S. Nath, T. Pal, Chem. Phys. Lett., 395, No. 4, 366–372 (2004), doi: 10.1016/j.cplett.2004.08.016.

36. P. Luliński, M. Bamburowicz-Klimkowska, M. Dana, D. Maciejewska, J. Sep. Sci., 40, No. 8, 1824–1833 (2017), doi: 10.1002/jssc.201601349.

37. B. Redruello, D. Arranz, B. Szekeres, B. del Rio, M. A. Alvarez, Food Chem., 460, 140622 (2024), doi: 10.1016/j.foodchem.2024.140622.

38. M. Schüller, T. A.-P. McQuade, M. S.-S. Bergh, S. Pedersen-Bjergaard, E. L. Øiestad, Talanta Open., 7, 100171 (2023), doi: 10.1016/j.talo.2022.100171.

39. F. R. Franzen, H. Gross, Nature, 206, 1052 (1965), doi: 10.1038/2061052a0.

40. J. Islam, H. Shirakawa, T. K. Nguyen, H. Aso, M. Komai, Food Biosci., 13, 56–59 (2016), doi: 10.1016/j.fbio.2015.12.006.

Источник

Информация

Автор

Anudevi S. D. Научно-исследовательский институт Четтинада, Академия исследований и образования Четтинада
Ebenezar K. K. Колледж смежных медицинских наук, Институт науки и технологий SRM
Narayan S. Научно-исследовательский институт Четтинада, Академия исследований и образования Четтинада

Страницы

573-1-573-10

Год издания

2026

Ключевые слова

Коллекции

Журнал прикладной спектроскопии