Изучено заживление ожоговых ран у лабораторных крыс под влиянием кверцетина (КВ) и его комплекса с 2-гидроксипропил-β-циклодекстрином (КВЦД), наносимых на раневую поверхность. Крысам-самцам линии Wistar делали ожоги 3Б степени на участке кожи в межлопаточной области, защищенной камерой, с помощью железного стержня, нагретого до 80 оС. Выполнено две серии опытов: в первой (21 животное) рану старались вести бережно, во второй (18 животных) – в течение 3–7 сут из раны удаляли некротические ткани. В ходе исследования отслеживали динамику заживления, опираясь на морфометрические критерии, выявляли время наступления полной эпидермизации, определяли фагоцитарный индекс нейтрофилов (ФИ) в смывах с раневой поверхности, проводили гистологическое исследование ткани, после декапитации (на 21-е и 43-и сутки) определяли лейкоцитарную формулу крови, ФИ и метаболическую активность нейтрофилов.Установлено, что удаление некротических тканей с раневой поверхности способствует более быстрому заживлению термического повреждения. Под влиянием данных веществ в первой серии опытов площадь вторичного струпа, присутствующего на раневой поверхности, оказалась меньше на 14-е сутки после повреждения, а в другой – увеличивались темпы эпидермизации раны на заключительном ее этапе. Выявлено позитивное влияние КВ и особенно КВЦД на возвращение к норме лейкоцитарной формулы крови, активизацию фагоцитарной и метаболической активности нейтрофилов на поверхности раны и в крови.
1. Местное консервативное лечение ран на этапах оказания помощи пострадавшим от ожогов : клин. рек. [Электронный ресурс] / А. А. Алексеев [и др.] // Общероссийская общественная организация «Объединение комбустиологов «Мир без ожогов». – Режим доступа : http://combustiolog.ru/wp-content/uploads/2013/07/Mestnoe-konservativnoelechenie-postradavshih-ot-ozhogov.pdf. – Дата доступа : 02.03.2019.
2. Investigation of properties and structural characterization of the quercetin inclusion complex with (2-hydroxypropyl)β-cyclodextrin / I. M. Savic [et al.] // J. Incl. Phenom. Macrocycl. Chem. – 2015. – Vol. 82, N 3–4. – Р. 383–394. https://doi. org/10.1007/s10847-015-0500-4
3. Quercetin accelerated cutaneous wounds healing in rats by increasing levels of VEGF and TGF-β1 / A. Gopalakrishan [et al.] // Indian J. Exp. Biol. – 2016. – Vol. 54, N 3. – P. 187–195.
4. Quercetin and low level laser therapy promote wound healing process in diabetic rats via structural reorganization and modulatory effects on inflammation and oxidative stress / O. M. Ahmed [et al.] // Biomed. Pharmacother. – 2018. – N 101. – P. 58–73. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.02.040
5. Fabrication of quercetin and curcumin bionanovesicles for the prevention and rapid regeneration of full-thickness skin defects on mice / I. Castangia [et al.] // Acta Biomater. – 2014. – Vol. 10, N 3. – Р. 1292–1300. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2013.11.005
6. Wound healing effect of ethanolic extract from Morning Glory (Ipomoea carnea Jacq.) leaves by using different models in rats / R. Shukla [et al.] // Pak. J. Pharm. Sci. – 2018. – Vol. 31, N 4. – P. 1355–1361.
7. Quercetin and its natural sources in wound healing management / N. Polera [et al.] // Curr. Med. Chem. – 2018. – Vol. 25. – P. 3. https://doi.org/10.2174/0929867325666180713150626
8. In vitro and in vivo characterization of quercetin loaded multiphase hydrogel for wound healing application / R. Jangde [et al.] // Int. J. Biol. Macromol. – 2018. – Vol. 115. – Р. 1211–1217. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.05.010
9. Ameliorative effect of nanoencapsulated flavonoid against chlorpyrifos-induced hepatic oxidative damage and immunotoxicity in Wistar rats / S. G. Suke [et al.] // J. Biochem. Mol. Toxicol. – 2018. – Vol. 32, N 5. – P. e22050. https://doi.org/10.1002/jbt.22050
10. Protective effect of quercetin in LPS-induced murine acute lung injury mediated by cAMP-Epac pathway / X. F. Wang [et al.] // Inflammation. – 2018. – Vol. 41, N 3. – P. 1093–1103. https://doi.org/10.1007/s10753-018-0761-3
11. Formulation optimization and in situ absorption in rat intestinal tract of quercetin-loaded microemulsion / Y. Gao [et al.] // Colloids. Surf. B: Biointerfaces. – 2009. – Vol. 71, N 2. – P. 306–314. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2009.03.005
12. In vitro and in vivo anticancer efficacy potential of Quercetin loaded polymeric nanoparticles / R. Baksi [et al.] // Biomed. Pharmacother. – 2018. – Vol. 106. – P. 1513–1526. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.07.106
13. Квантово-химическое моделирование электронной структуры кверцетина и ингибирование кверцетином и комплексом кверцетин-гидроксипропинβ-циклодекстрин перекисного окисления липидов в митохондриях и эритроцитах крыс / А. Г. Вейко [и др.] // Вес. НАН Беларусі. Сер. біял. навук. – 2018. – Т. 63, № 4. – С. 500–512.
14. Current concepts in debridement: science and strategies / E. L. Anghel [et al.] // Plast Reconstr. Surg. – 2016. – Vol. 138. – Р. 82S–93S. https://doi.org/10.1097/PRS.0000000000002651
15. Tiwari, V. K. Burn wound: How it differs from other wounds? / V. K. Tiwari // Indian J. Plast. Surg. – 2012. – Vol. 45, N 2. – P. 364–373. https://doi.org/10.4103/0970-0358.101319
16. Новиков, Д. К. Оценка иммунного статуса / Д. К. Новиков, В. И. Новикова. – Витебск : Витеб. мед. ин-т, 1996. – 282 с.
17. Новикова, И. А. Метод комплексной оценки внеи внутриклеточных факторов бактерицидности нейтрофилов / И. А. Новикова, В. В. Железко. – Гомель : ГомГМУ, 2014. – 7 с.
18. Новиков, Д. К. Клиническая иммунопатология / Д. К. Новиков, П. Д. Новиков. – М. : Мед. лит., 2009. – 448 с.
19. Myofibroblast-мediated сontraction / W. M. Kattan [et al.] // J. Coll. Physicians. Surg. Pak. – 2017. – Vol. 27, N 1. – P. 38–43.
20. Involvement of eIF6 in external mechanical stretch-mediated murine dermal fibroblast function via TGF-β1 pathway / Q. Shu [et al.] // Sci. Reports. – 2016. – Vol. 6, N 1. – Art. 36075. https://doi.org/10.1038/srep36075
