Покрытие поливиниловым спиртом (ПВС) магнитных микросфер (ММС) на основе хитозана, сшитого глутаральдегидом, уменьшает их неспецифическое связывание с мононуклеарными клетками крови (МНК) эффективнее, чем покрытие карбоксиметилдекстраном со степенью карбоксилирования <10 %. Поливинилспиртовые ММС, покрытые дополнительным слоем ПВС после сшивки глутаральдегидом, в т. ч. функционализованные карбоксильными группами благодаря обработке H2O2, характеризуются низким неспецифическим связыванием с МНК. В осадке после магнитной сепарации на одну клетку приходится 4670 ± 760 поливинилспиртовых ММС, обработанных 4 % H2O2, а коммерческих ММС MagnosphereTM MS300/Carboxyl – 2040 ± 400.
ЛАЗНЕВ К. В., АГАБЕКОВ В. Е. СВЯЗЫВАНИЕ ГЕЛЕВЫХ МАГНИТНЫХ МИКРОСФЕР С МОНОНУКЛЕАРНЫМИ КЛЕТКАМИ КРОВИ. Доклады Национальной академии наук Беларуси. 2016;60(2):67-72.
1. Plouffe, B. D. Fundamentals and application of magnetic particles in cell isolation and enrichment: a review / B. D. Plouffe, S. K. Murthy, L. H. Lewis // Rep. Prog. Phys. – 2015. – Vol. 78, N 1. – P. 016601. – doi: 10.1088/0034- 4885/78/1/016601.
2. Salmaso, S. Stealth properties to improve therapeutic efficacy of drug nanocarriers / S. Salmaso, P. Caliceti // J. Drug. Deliv. – 2013. – Vol. 2013. – Аrticle ID 374252.
3. A biotechnological perspective on the application of iron oxide magnetic colloids modified with polysaccharides / A. M. G. C. Dias [et al.] // Biotechnology Advances. – 2011. – Vol. 29. – P. 142–155.
4. Hermanson, G. T. Bioconjugate Techniques / G. T. Hermanson. – 2nd ed. – Elsevier, 2008.
5. Self-assembled monolayers with different terminating groups as model substrates for cell adhesion studies / N. Faucheux [et al.] // Biomaterials. – 2004. – Vol. 25. – P. 2721–2730.
6. Influence of Co amount on the efficiency of energy absorption of Fe-Co ferrite nanoparticles / K. A. Kekalo [et al.] // J. Magn. Magn. Mater. – 2009. – Vol. 321. – P. 1514–1516.
7. Gelatin nanoparticles by two-step desolvation – a new preparation method, surface modifications and cell uptake / C. J. Coester [et al.] // J. Microencapsul. – 2000. – Vol. 17. – P. 187–193.
8. Panda, S. K. Isolation of Human PBMCs / S. K. Panda, B. Ravindran // Bio-protocol 3(3): e323. – 2013 [Electronic resource]. – Mode of access: http://www.bio-protocol.org/e323.
9. Tamai, T. Effect of cross-linking on polymer diffusion in poly(butylmethacrylate-co-butyl acrylate) latex films / T. Tamai, P. Pinenq, M. A. Winnik // Macromolecules. – 1999. – Vol. 32. – P. 6102–6110.
10. Effect of surface charge on the colloidal stability and in vitro uptake of carboxymethyl dextran-coated iron oxide nanoparticles / V. Ayala [et al.] // J. Nanopart. Res. – 2013. – Vol. 15, N 8. – P. 1874.
11. Polyvinyl alcohol-glutaraldehyde network as a support for protein immobilisation / A. M. Araujo [et al.] // Biotechnology Techniques. – 1997. – Vol. 1, N 2. – Р. 67–70.
12. Gillies, E. R. Acetals as pH-sensitive linkages for drug delivery / E. R. Gillies, A. P. Goodwin, J. M. J. Frechet // Bioconjugate Chem. – 2004. – Vol. 15. – P. 1254–1263.
13. Glutaraldehyde: behavior in aqueous solution, reaction with proteins, and application to enzyme crosslinking / I. Migneault [et al.] // BioTechniques. – 2004. – Vol. 37. – P. 790–802.
14. Hydrogen peroxide oxidation of aldehydes to carboxylic acids: an organic solvent-, halide- and metal-free procedure / K. Sato [et al.] // Tetrahedron Letters. – 2000. – Vol. 41, N 9. – P. 1439–1442.
15. Surface chemistry and polymer film thickness effects on endothelial cell adhesion and proliferation / D. Bhattacharyya [et al.] // Biomed. Mater. Res. A. – 2010. – Vol. 94. – P. 640–648.
