1. Козубов, Г. М. Современные голосеменные: (морфолого-систематический обзор и кариология) / Г. М. Козубов, Е. Н. Муратова. – Л.: Наука, 1986. – 192 с.

2. The Norway spruce genome sequence and conifer genome evolution / B. Nystedt, N. R. Street, A. Wetterbom [et al.] // Nature. – 2013. – Vol. 497, N 7451. – P. 579–584. https://doi.org/10.1038/nature12211

3. Efficient Multi-Sites Genome Editing and Plant Regeneration via Somatic Embryogenesis in Picea glauca / Y. Cui, J. Zhao, Y. Gao [et al.] // Frontiers in Plant Science. – 2021. – Vol. 12. – Art. 751891. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.751891

4. Бородина, Н. А. Полиплоидия в интродукции древесных растений / Н. А. Бородина. – М.: Наука, 1982. – 176 с.

5. Мацкевич, Н. В. Охрана редких генотипов лесных деревьев н кустарников / Н. В. Мацкевич. – М.: Агропромиздат, 1987. – 207 с.

6. Ohri, D. Polyploidy in Gymnosperms-A Reappraisal / D. Ohri // Silvae Genetica. – 2021. – Vol. 70, N 1. – P. 22–38. https://doi.org/10.2478/sg-2021-0003

7. Winton, L. L. Natural polyploidy in juvenile white and black spruce / L. L. Winton // Minnesota Forestry Notes. – 1964, N 144. – 2 p.

8. Kiellander, C. L. Polyploidy in Picea abies / C. L. Kiellander // Hereditas. – 1950. – Vol. 36, N 3. – P. 513–516.

9. Ташев, А. Н. Число хромосом и хромосомные перестройки у ели обыкновенной Picea abies (L.) H. Karst. в лесах Рило-Родопского горного массива Болгарии / А. Н. Ташев, Т. С. Седельникова, А. В. Пименов // Сибирский лесной журнал. – 2015, № 5. – С. 77–86.

10. Karyological and Cytogenetic Studies of Coniferous Plants Growing under Extreme Conditions / E. N. Muratova, T. S. Sedel’nikova, O. V. Goryachkina, A. V. Pimenov // Contemporary Problems of Ecology. – 2023. – Vol. 16, N 5. – P. 564–574. https://doi.org/10.1134/S1995425523050074

11. Гуляева, Е. Н. Сомаклональная изменчивость у хвойных в культуре in vitro / Е. Н. Гуляева, Р. В. Игнатенко, Н. А. Галибина // Экологическая генетика. – 2020. – Т. 18, № 3. – С. 301–315.

12. Sarmast, M. K. Somaclonal Variation in Conifers / M. K. Sarmast, Z. R. Ghaleh, M. Alizadeh // Somaclonal Variation: Basic and Practical Aspects / ed. C. Sánchez-Romero. – Cham, 2024. – P. 123–142. https://doi.org/10.1007/978-3-031-51626-9_7

13. Megagametophyte in vitro tissue culture of Pinus sibirica and Larix sibirica and somaclonal variation / I. Tretyakova, A. Ivanitskaya, M. Park [et al.] // Proceedings of the 3rd International Conference of the IUFRO Unit 2.09.02 on “Woody plant production integrating genetic and vegetative propagation technologies”, Vitoria-Gasteiz, Spain, 8–12 September 2014 / eds.: Y. S. Park, J. M. Bonga. – 2015. – P. 45–57. – URL: https://www.iufro.org/media/fileadmin/publications/proceedings-archive/20902-vitoria-gasteiz14-proceedings.pdf (дата обращения: 10.02.2025).

14. Cytogenetic Stability of Young and Long-Term Embryogenic Cultures of Larix sibirica / O. V. Goryachkina, M. E. Park, I. N. Tretyakova [et al.] // Cytologia. – 2018. – Vol. 83, N 3. – P. 323–329. https://doi.org/10.1508/cytologia.83.323

15. Molecular evidence of true-to-type propagation of a 3-year-old Norway spruce through somatic embryogenesis / L. Harvengt, J. F. Trontin, I. Reymond [et al.] // Planta. – 2001. – Vol. 213, N 5. – P. 828–832. https://doi.org/10.1007/s004250100628

16. Survival and genetic stability of Picea abies embryogenic cultures after cryopreservation using a pregrowth-dehydration method / T. Hazubska-Przybyl, P. Chmielarz, M. Michalak [et al.] // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). – 2013. – Vol. 113. – P. 303–313. https://doi.org/10.1007/s11240-012-0270-2

17. Somatic embryogenesis and somaclonal variation in Norway spruce: morphogenetic, cytogenetic and molecular approaches / J. L. Fourre, P. Berger, L. Niquet, P. André // Theoretical and Applied Genetics. – 1997. – Vol. 94. – P. 159–169. https://doi.org/10.1007/s001220050395

18. Genetic variation in microsatellite stability of somatic embryo plants of Picea abies: A case study using six unrelated full-sib families / A. Helmersson, G. Jansson, P. V. Bozhkov, S. Von Arnold // Scandinavian Journal of Forest Research. – 2008. – Vol. 23, N 1. – P. 2–11. https://doi.org/10.1080/02827580701820043

19. Litvay, J. D. Influence of a loblolly pine (Pinus taeda L.). Culture medium and its components on growth and somatic embryogenesis of the wild carrot (Daucus carota L.) / J. D. Litvay, D. C. Verma, M. A. Johnson // Plant Cell Reports. – 1985. – Vol. 4, N 6. – P. 325–328. https://doi.org/10.1007/bf00269890

20. Морфогенез эмбриогенных культур ели европейской белорусского происхождения на различных этапах культивирования / М. П. Кусенкова, Т. Пшибул-Хазубска, Д. В. Кулагин [и др.] // Проблемы лесоведения и лесоводства: сб. науч. тр. / Ин-т леса НАН Беларуси. – Гомель, 2020. – Вып. 80. – С. 55–62.

21. Кусенкова, М. П. Прорастание соматических эмбриоидов ели европейской, полученных при различной продолжительности культивирования эмбриогенного каллуса на питательных средах для созревания / М. П. Кусенкова // Проблемы лесоведения и лесоводства: сб. науч. тр. / Ин-т леса НАН Беларуси. – Гомель, 2021. – Вып. 81. – С. 169–177.

22. Падутов, В. Е. Методы молекулярно-генетического анализа / В. Е. Падутов, О. Ю. Баранов, Е. В. Воропаев. – Мн.: Юнипол, 2007. – 176 с.

23. Characterization of variable EST SSR markers for Norway spruce (Picea abies L.) / S. Fluch, A. Burg, D. Kopecky [et al.] // BMC Research notes. – 2011. – Vol. 4. – Art. 401. https://doi.org/10.1186/1756-0500-4-401

24. Молекулярно-генетический анализ размноженных in vitro клонов Populus alba L. И Populus tremula L. c использованием микросателлитных маркеров / Т. А. Гродецкая, О. Ю. Баранов, С. Г. Ржевский [и др.] // Лесотехнический журнал. – 2021. – Т. 11, № 3. – С. 16–30.

25. Баранов, О. Ю. Использование молекулярно-генетических маркеров для анализа плоидности осины и березы / О. Ю. Баранов, В. Балюцкас // Проблемы лесоведения и лесоводства: сб. науч. тр. / Ин-т леса НАН Беларуси. – Гомель, 2009. – Вып. 69. – С. 129–135.

26. Development of novel EST-SSR markers for ploidy identification based on de novo transcriptome assembly for Misgurnus anguillicaudatus / B. Feng, S. V. Yi, M. Zhang, X. Zhou // PloS one. – 2018. – Vol. 13, N 4. – P. e0195829. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0195829

27. Nuclear genome stability in long-term cultivated callus lines of Fagopyrum tataricum (L.) Gaertn / A. Betekhtin, M. Rojek, J. Jaskowiak [et al.] // PloS One. – 2017. – Vol. 12, N 3. – P. e0173537. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0173537

28. Somaclonal Variation – Advantage or Disadvantage in Micropropagation of the Medicinal Plants / G. Duta-Cornescu, N. Constantin, D.-M. Pojoga [et al.] // International Journal of Molecular Sciences. – 2023. – Vol. 24, N 1. – Art. 838. https://doi.org/10.3390/ijms24010838

29. Шестибратов, К. А. Лесная биотехнология: методы, технологии, перспективы / К. А. Шестибратов, В. Г. Лебедев, А. И. Мирошников // Биотехнология. – 2008. – № 5. – С. 3–22.

30. Сомаклональная изменчивость Iris pseudacorus L. По данным RAPD- и цитогенетического анализа / М. М. Козыренко, Е. В. Артюхова, Е. В. Болтенков, Л. С. Лауве // Биотехнология. – 2004. – № 2. – С. 13–23.

31. Taq DNA polymerase slippage mutation rates measured by PCR and quasi-likelihood analysis: (CA/GT)n and (A/T)n microsatellites / D. Shinde, Y. L. Lai, F. Z. Sun, N. Arnheim // Nucleic Acids Research. – 2003. – Vol. 31, N 3. – P. 974–980. https://doi.org/10.1093/nar/gkg178

32. Галинская, Т. В. Предубеждения о микросателлитных исследованиях и как им противостоять / Т. В. Галинская, Д. М. Щепетов, С. Н. Лысенков // Генетика. – 2019. – Т. 55, № 6. – С. 617–632.

33. Hematopoietic chimerism monitoring based on STRs: quantitative platform performance on sequential samples / D. Kristt, M. Israeli, R. Narinski [et al.] // Journal of Biomolecular Techniques. – 2005. –Vol. 16, N 4. – P. 378–389.

34. Седельникова, Т. С. Изменчивость числа хромосом как фактор микроэволюции и адаптации хвойных / Т. С. Седельникова // Фактори експериментальної еволюції організмів. – 2016. – Т. 18. – С. 24–28.

35. Князева, С. Г. Кариологический обзор хвойных растений на основе базы данных по хромосомным числам / С. Г. Князева, Е. Н. Муратова // Хвойные бореальной зоны. – 2010. – Т. 27, № 1–2. – С. 97–101.

36. Горячкина, О. В. Цитогенетические реакции хвойных растений в антропогенно нарушенных районах г. Красноярска и его окрестностей / О. В. Горячкина, О. А. Сизых // Хвойные бореальной зоны. – 2012. – Т. 30, № 1–2. – С. 46–51.

37. Кунах, В. А. Геномная изменчивость соматических клеток растений / В. А. Кунах // Биополимеры и клетка. – 1995. – Т. 11. – № 6. – С. 5.

38. Kumar, P. S. Chromosomal instability in callus culture of Pisum sativum / P. S. Kumar, V. L. Mathur // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 2004. – Vol. 78, N 3. – P. 267–271. https://doi.org/10.1023/B:TICU.0000025669.11442.3e

39. Mishiba, K.-I. Ploidy distribution in the explant tissue and the calluses induced during the initial stage of internode segment culture of Asparagus officinalis L. / K.-I. Mishiba, K.-I. Tawada, M. Mii // In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant. – 2006. – Vol. 42, N 1. – P. 83–88. https://doi.org/10.1079/IVP2005724

40. Шмаков, В. Н. Соматический эмбриогенез представителей рода Larix: состояние и перспективы / В. Н. Шмаков, Ю. М. Константинов // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2020. – Т. 24. – № 6. – С. 575–588.

41. Особенности соматического эмбриогенеза длительно пролиферирующих эмбриогенных клеточных линий Larix sibirica in vitro / И. Н. Третьякова, М. Э. Пак, А. С. Иваницкая, Н. В. Орешкова // Физиология растений. – 2016. – Т. 63, № 6. – С. 812–822.